興味を持って進めている研究


私の研究室では所属学生と共に以下の研究を進めています。

(1)サンゴ礁魚類の月周性・潮汐性産卵現象

(2)魚類における卵黄形成機構


サンゴ礁魚類の性成熟と環境利用特性

  1. 月周性
  2. 半月周性
  3. 潮汐性
  4. サンゴ礁魚類の性成熟と光周性

 魚類には月から得られる情報を繁殖活動の同期に利用しているものがいます。すなわち、特定の月齢で月に一回だけ産卵する魚、二週間に一回もしくは毎日、潮の変化に合わせて産卵する魚がいます。サンゴ礁には他の海域とは比べものにならないほどたくさんの魚が月と同調した産卵を繰り返しています。この理由として、温帯から極域に比べて熱帯や亜熱帯では水温や日長の変化が小さく、月が地球に及ぼす環境変化がサンゴ礁では相対的に大きくなっているからだと考えられています。いったい魚たちは月から得られるどのような周期性を利用して、産卵の時刻あわせをしているのでしょうか。潮の満ち引き、月光の変化、はたまた引力変化などの様々な要因が考えられます。しかし、それらのどれが同調性産卵現象に関係しているのかはほとんどわかっていません。

 私たちは、月からの刺激の何が、そして魚は月の刺激をどのように感じ取ってり体内リズムへと転換しているのかを明らかにしていきたいと思っています。この研究は時間生物学(生物リズムを記載し、その機構を解明する生命科学の一分野)の範疇に入ると考えられますが、現在のところ月周性の成立機序に関してはほとんど研究が進んでいないのが現状です。この理由の一つに、月周性を示す生物が研究対象にされてこなかったことが挙げられます(すなわち、サンゴ礁生物が研究対象にされてこなかったのです)。前述したように、サンゴ礁の生物は月の周期性を生命活動の時刻あわせに巧みに利用しています。この海域の生物を研究対象とすることによって、生物のもつ「時間」の全体像を明らかにしていくことができると信じています。

 私自身、サンゴ礁の生き物を研究対象にするまでは(沖縄に来るまでは)、天体活動(月を含めた)が生物の生命活動に重要な役割を持っていることはほとんど気にもかけていませんでした。しかし、サンゴ礁生物の営みを目の当たりにして、月がもつ重要性に気づかされる毎日です。サンゴ礁の生物も月を見ながらもしくは感じながら、様々な営みを行っています。私はこの興味ある生命現象を科学的に明らかにしたいと思っています。ここに挙げた研究結果はまだまだ不十分で未熟なものです。しかし、研究結果を地道に積み上げていくことによって、生命活動における月の重要性を少しでも世の中に広げることができれば幸いです。日本人は古来より、月を愛でながら様々な思いを歌に詠んできました。夜空にぽっかり浮かんでる満月を見ると様々な思いが浮かんできたのかもしれません。沖縄の人はこのような感覚を今でも持っています。沖縄の人たちが海洋民族として海と共に生きてきたことを示しているのかもしれません。

月周性産卵

 産卵期に特定の月齢に月一回産卵を繰り返す魚たちがいます。例えば、ハタはアイゴ類が月周性産卵を行います。私たちはサンゴ礁に普通に生息するアイゴ類を実験材料にしてこの研究を進めています。沖縄には主に4種類のアイゴ類(ハナアイゴ、シモフリアイゴ、アミアイゴ、ゴマアイゴ)が生息しています。これまでの研究でハナアイゴは上弦の月に、シモフリアイゴとアミアイゴは新月に、そしてゴマアイゴは上弦の月に一斉に産卵することがわかりました。それぞれの種によって同調性産卵に利用している月齢は異なるようです。

 地球全体に目を向けてアイゴ類の成熟と産卵を比較してみると、産卵期の長さは海域ごとに異なりますが、どこの海域にいってもアミアイゴは新月に、そしてゴマアイゴは上弦の月で産卵していることがわかりました。この結果はある種が利用している月齢はどこに行っても同じであることを示しています。想像すると、ある種類は地球上で時間をおいて一斉に産卵していることになります。

 沖縄ではアミアイゴの稚魚を「スク」と言います。旧暦の6月1日と7月1日(但し、地域よっては8月1日もあり得ます)にスクが沿岸に押し寄せてきます。沖縄の人たちはスクが来る日を楽しみにしています。このことは、親の産卵ばかりでなく子供の回遊(回帰)も同じ月齢で行われることを示しています。アミアイゴの親が産卵した新月のちょうど一ヶ月後の新月に、子供は沿岸に帰ってくることになります。すなわち、親も子も体のどこかで新月を知っているのです。

 さて、アイゴ達はどの様にして特定の産卵月齢を認識するのでしょうか?ゴマアイゴを潮汐の直接的な影響のない水槽内で飼っていても産卵は同じ月齢(上弦の月)付近で行われます。したがって、潮汐が産卵月齢を決定している直接的な要因である可能性は低いと思っています。そこで、私たちは月光の変化を魚たちが認識しているのではないかと考えました。アイゴ類が月光を感じ取るかどうかを調べるために、私たちは最近メラトニンというホルモンに注目しています。メラトニンは松果体や網膜で合成されるインドールアミン類で、明確な日周変動を繰り返すことが知られています。多くの動物で血中メラトニン量は昼に低く夜に高くなります。私たちはゴマアイゴとシモフリアイゴのメラトニンの血中変化を調べてみました。その結果、他の魚と同じく、血中メラトニン量は昼に低くて夜に高くなることが分かりました。興味深いことに、満月と新月の夜(24:00)にメラトニン量を測定してみると、新月の血中メラトニン量は満月の時よりも高くなることがわかりました。このことはアイゴでは夜の明るさに応じて血中メラトニン量が変動していることを示しています。培養した松果体においても同様の結果が得られています。新月時のメラトニンの日周変動が満月時のそれよりも大きくなっていることが考えられ、この変化が一ヶ月の周期性になっている可能性があります。

 地球上の生物はほぼ24時間の概日時計(サーカディアンリズム)を持っています。私たち人間も含めて体内時計を環境変化(主に明暗変動)を使って毎日リセットし、正確な24時間のリズムを刻んでいます。なぜ生物は24時間リズムを刻むのかに関しては分子生物学的に詳細な研究が進められております。概日時計の分子機構は現代生物学のホットな領域の一つで、概日時計に関連するいくつかの時計関連遺伝子が同定されています。一日より長い生物時計(概月時計や概年時計)に関しては、その存在を示唆する報告はありますが、系統的な研究はほとんど進められていません。私たちはアイゴ類を使って概日・概月時計についてアプローチしようと考えています。その第一段階として、脊椎動物の主たる時計遺伝子(Period)をクローニングし、その発現量の変化を調べました。複数あるPeriod遺伝子のうち、Per1は脳や網膜において日周変動しており、明け方に高くなりました。Per1は恒暗・恒明条件下でも同様の変化をしていたために、概日性の制御を受けていると考えられます。

  1. Fukushiro, M., Takeuchi, T., Takeuchi, Y., Hur, S.P., Sugama, N., Takemura, A., Kubo, Y., Okano, K. and Okano, T. (2011). Lunar phase-dependent expression of cryptochrome predicts a photoperiodic mechanism for lunar phase-recognition in rabbitfish. PLoS One, 6: e28643.[abstract]
  2. Sugama, N., Park, J.G., Park, Y.J., Takeuchi, Y., Kim, S.J. and Takemura, A. (2008) Moonlight affects nocturnal Period2 transcript levels in the pineal gland of the reef fish Siganus guttatus. Journal of Pineal Research, 45: 133-141. [abstract]
  3. Park, Y.J., Park, J.G., Jeong, H.B., Takeuchi, Y., Kim, S.J., Lee, Y.D. and Takemura, A. (2007). Expression of the melatonin receptor Mel1c in neural tissues of the reef fish Siganus guttatus. Comparative Physiology and Biochemistry, 147A: 103-111. [abstract]
  4. Park, J.G., Park, Y.J., Sugama, N., Kim, S.J. and Takemura, A. (2007). Molecular cloning and diurnal variations of the Period gene in a reef fish Siganus guttatus. Journal of Comparative Physiology A, 193: 403-411. [abstract]
  5. Park, Y.J., Park, J.G., Hiyakawa, N., Lee, Y.D., Kim, S.J. and Takemura, A. (2007). Diurnal and circadian regulation of a melatonin receptor, MT1, in the golden rabbitfish, Siganus guttatus. General and Comparative Endocrinology, 150: 253-162. [abstract]
  6. Park, Y.J., Park, J.G., Kim, S.J., Lee, Y.D., Rahman, M.S. and Takemura, A. (2006). Melatonin receptor of a reef fish with lunar-related rhythmicity: cloning and daily variations. Journal of Pineal Research, 41: 166-174. [abstract]
  7. Takemura, A., Ueda, S., Hiyakawa, N. and Nikaido, Y. (2006). A direct influence of moonlight intensity on changes in melatonin production by cultured pineal glands of the golden rabbitfish, Siganus guttatus. Journal of Pineal Research, 40: 236-241. [abstract]
  8. Takemura, A., Susilo, E.S., Rahman, M.S. and Morita, M. (2004). Perception and possible utilization of moonlight intensity for reproductive activities in a lunar-synchronized spawner, the golden rabbitfish. Journal of Experimental Zoology, 301A: 844-851. [abstract]
  9. Rahman, M.S., Kim, B.H., Takemura, A., Park, C.B. and Lee, Y.D. (2004). Effects of moonlight exposure on plasma melatonin rhythms in the seagrass rabbitfish, Siganus canaliculatus. Journal of Biological Rhythms, 19: 325-334. [abstract]
  10. Rahman, M.S., Kim, B.H., Takemura, A., Park, C.B. and Lee, Y.D. (2004). Influence of light-dark and lunar cycles on the ocular melatonin rhythms in the seagrass rabbitfish, a lunar-synchronized spawner. Journal of Pineal Research, 37: 122-128. [abstract]
  11. Rahman, M.S., Takemura, A., Park, Y.J., Takano, K. (2003). Lunar cycle in the reproductive activity in the forktail rabbitfish. Fish Physiology and Biochemistry, 28: 443-444. [abstract]
  12. Rahman, M.S., A. Takemura, S. Nakamura and K. Takano (2003). Rhythmic changes in testicular activity with lunar cycle in the forktail rabbitfish. Journal of Fish Biology, 62: 495-499. [abstract]
  13. Rahman, M.S., Morita, M., Takemura, A. and Takano, K. (2003). Hormonal changes in relation to lunar periodicity in the testis of the forktail rabbitfish, Siganus argenteus. General and Comparative Endocrinology, 131, 302-309. [abstract]
  14. Harahap, A.P., A. Takemura, S. Nakamura, M.S. Rahman, and K. Takano (2002). Lunar-synchronization in acquisition of sperm motility in the spiny rabbitfish, Siganus spinus (Linnaeus). Fisheries Science, 68: 706-708. [abstract]
  15. Rahman, M.S. A. Takemura and K. Takano (2002). Lunar synchronization of in vitro steroidogenesis by ovaries in the golden rabbitfish, Siganus guttatus (Bloch). General and Comparative Endocrinology, 125: 1-8. [abstract]
  16. Lee, Y.-D., Park, S.-H., Takemura, A. and Takano K. (2002). Histological observations of seasonal reproductive and lunar-related spawning cycles in the female honeycomb grouper, Epinephelus merra, in Okinawan water. Fisheries Science, 68: 872-877. [abstract]
  17. Rahman, M.S., A. Takemura and K. Takano (2001). Lunar-synchronization of testicular development and steroidogenesis in rabbitfish. Comparative Biochemistry and Physiology, 129B: 367-373. [abstract]
  18. Harahap, A.P., A. Takemura, S. Nakamura, M.S. Rahman, and K. Takano (2001). Histological evidence of lunar-synchronized gonadal maturation and spawning in the spiny rabbitfish, Siganus spinus (Linnaeus), around the Ryukyus. Fisheries Science, 67: 888-893. [abstract]
  19. Rahman M.S., A. Takemura and K. Takano (2000). Correlation between plasma steroid hormones and vitellogenin profiles and lunar periodicity in the female golden rabbitfish, Siganus guttatus (Bloch). Comparative Biochemistry and Physiology,127B:113-122. [abstract]
  20. Rahman, M.S., A. Takemura and K. Takano (2000). Lunar synchronization of testicular development and plasma steroid hormone profiles in the golden rabbitfish, Siganus guttatus (Bloch). Journal of Fish Biology, 57(4): 1065-1074. [abstract]
  21. Hoque, M.M., A. Takemura, M. Matsuyama, S. Matsuura and K. Takano (1999). Lunar spawning in Siganus canaliculatus. Journal of Fish Biology, 55: 1213-1222. [abstract]

半月周期性産卵

 サンゴ礁には月に2回の産卵を繰り返す魚たちも多く棲息しています。スズメダイやネンブツダイの仲間がこれに属します。私たちは潮汐の影響を大きく受ける河口域やマングローブ域の魚(スミゾメスズメダイやアマミイシモチ)を使って、半月周性産卵の解明を行っています。産卵期にスミゾメスズメダイを数日おきに採集して生殖腺の発達を組織学的に観察した結果、満月と新月の間で卵巣中の卵母細胞がもっとも発達することが分かりました。スミゾメスズメダイは雄がなわばりをもって受精卵を守る習性があります。おそらく、スミゾメスズメダイの産卵は小潮の時に行われ、大潮の時に孵化が起こるものと考えられました。スミゾメスズメダイを潮汐の刺激のない水槽内で飼育すると、産卵や孵化が起こるタイミングが自然界とは必ずしも一致しないことが判明しました。この結果は、スミゾメスズメダイが2週間に一回起こる潮汐の変化を感じ取って、産卵に適した潮を把握していると思われます。

  1. Pisingan, R.S. and Takemura, A. Apparent semilunar spawning rhythmicity in a brackish cardinalfish, Apogon amboinensis. Journal of Fish Biology, 70: 1412-1422. [abstract].
  2. Pisingan, R.S., Harnadi, L. and Takemura, A. (2006). Semilunar spawning periodicity in the brackish damsel, Pomacentrus taeniometopon Breeker. Fisheries Science, 72: 1256-1260. [abstract]
  3. Fujita, T., A. Takemura and K. Takano (1997). Histological observations of annual reproductive and tidal spawning rhythm in the female porcupine fish Diodon holocanthus. Fisheries Science, 65: 715-720.

潮汐性産卵

 ベラ類の多くは夜間の潜砂行動を伴う明確な日周リズムを示します。温帯域に棲息するベラ類は早朝に毎日産卵していることが示されていますが、サンゴ礁域に棲息するベラ類は昼間の満潮時に産卵を繰り返すことが知られています。私たちはミツボシキュウセンを実験材料にして、日周性活動と潮汐性産卵の関連を研究しています。3ヶ月に渡ってミツボシキュウセンの潜砂行動を半自然状態で観察した結果、ミツボシキュウセンが砂に潜る時間は日の入り前で日によって異なりますが、砂から出てくる時間は日の出時刻にほぼ一致して起こることが判明しました。潜砂行動は概日時計によって制御されていることが示唆されていますが、我々の得てきた結果からミツボシキュウセンが砂から出てくる時間(日光に当たる時間)で概日時計をリセットし、翌日の日の出時間を予測ているのではないかと思われます。

 朝9時に時間を固定して3から4日おきに魚を釣穫して卵巣の組織像を比較し結果、満潮の時に卵巣がもっとも発達し、それ以降の潮で採集した魚の卵巣内には産卵を示す排卵後濾胞が認められました。他の時間帯に同様の実験を行っても満潮時の卵巣がもっとも発達していました。この結果は、ミツボシキュウセンの産卵は満潮にあわせて行われていることを示しています。従って、ミツボシキュウセンは日周活動を基本としながら、おそらく潜砂している時間帯(夜で動かない時間)で潮の変化を感じ取って、来たるべき満潮の時間を予測しているものと考えられます。

 ドーパミンはカテコール環をもつ脳内神経伝達物質として知られています。魚類ではドーパミンは生殖遷刺激ホルモン放出抑制因子として働くことが報告されており、ドーパミン拮抗剤を投与すると排卵や産卵が誘導されることがいくつかの魚類で示されています。このような背景から、私たちは、ドーパミンの日周性や潮汐性変動を調べていました。その結果、ミツボシキュウセンの脳内ドーパミン代謝は明確な日周性を示し、昼間に高く、夜に低くなることを明らかにしました。魚にメラトニンを投与すると脳内ドーパミン代謝が減少することも合わせて明らかにしました。さて、脳内ドーパミン代謝と潮汐との関係はどの様になっているのでしょうか。この疑問に答えるため、ミツボシキュウセンを人為的な潮汐条件下で飼育して脳内ドーパミン代謝を測定しました。その結果、満潮条件を与えた場合に脳内ドーパミン代謝は減少しました。これらの結果は脳内ドーパミン代謝が日周性と潮汐性の二つの要因で制御されていることを示しています。夜間に活動を停止し、魚体が静止しているベラ科魚類のような場合に、潮汐変動は規則的な環境要因として認知できる可能性があると考えられます。夜を前半と後半に分けて考えた場合、夜の前半(例えば18時〜24時)に満潮が来る場合には潮汐変動によるドーパミン代謝が優先するため、潮汐性の産卵が起こる。そして夜の後半(例えば24時〜06時)に満潮が来る場合には、日周性のドーパミンピークが先に来るため、日周性の産卵が起こる。ドーパミンを中心に考えた場合、このようなストーリーを描くことができ、潮汐性産卵をうまく説明することが出来ます。

  1. Takemura, A., Shibata, Y., Takeuchi, Y., Hur, S.P., Sugama, N., Badlezaman, Md. (2012). Effects of hydrostatic pressure on monoaminergic activity in the brain of a tropical wrasse, Halicoeres trimaculatus: possible implication for controlling tidal-related reproductive activity. General and Comparative Endocrinology, 175: 173-179. [abstract]
  2. Hur, S.P., Takeuchi, Y., Esaka, Y., Wambiji, N., Park, Y.J., Kang, H.C., Jeong, H.B., Lee, Y.D., Kim, S.J. and Takemura, A. (2011). Diurnal expression patterns of neurohypophysial hormone genes in the brain of the threespot wrasse Halichoeres trimaculatus. Comparative Biochemistry and Physiology. 158A: 490-497. [abstract]
  3. Takemura, A., Uchimura, M. and Shibata, Y. (2010) Dopaminergic activity in relation to changes in day-night and hydrostatic pressure in the brain of tropical wrasse Halichoeres trimaculatus. General and Comparative Endocrinology. 166; 513-519.[abstract]
  4. Takemura, A., Oya, R., Shibata, Y., Uchimura, M. and Nakamura, S. (2008). Role of the tidal cycle in the gonadal development and spawning of the tropical wrasse Halicoeres trimaculatus. Zoological Science, 25: 572-579. [abstract]

 

サンゴ礁魚類の性成熟と光周性

 温帯域に生息する魚類の多くは水温や日長の変化を感受して生殖腺の発達が誘導されます。それではサンゴ礁の魚はどの様な環境変動を感じ取りながら生殖腺が発達するのでしょうか。私たちはこの点についてアイゴ類やスズメダイ類を用いて調べています。まず、アイゴ類についてですが、この魚については同一の魚種を様々な場所で採集し、同一手法で解析し、環境変動と比較することから明らかにしようとしてます。沖縄に生息するゴマアイゴやアミアイゴの産卵期は春から初夏にかけて起こり、この時期には水温や日長が増加します。このことから亜熱帯サンゴ礁に適応した魚の生殖腺の発達にはこれらの環境要因が重要であることが推測されます。一方、インドネシアに生息するゴマアイゴの産卵期は2回あり、それらは熱帯モンスーンと深く関わっていることがわかりました。すなわち、雨季から乾季、乾季から雨季へと季節が変わる時期に魚が生殖腺を発達させていました。熱帯サンゴ礁では日長や水温の変動はそれほど大きくなく、これらの要因を主たる環境要因としていると考えるのには少し無理があるかもしれません。熱帯モンスーンに関わる環境変動時には海の一次生産量が大きく変動し、魚の栄養状態が生殖腺の発達に大きく関わっているのかもしれません。これらのことから、熱帯に起源を持つ魚の生殖腺の発達を刺激する環境要因は複数存在し、これらが全て満足いく状態にある時期にだけ生殖腺が発達すると考えらます。亜熱帯域においては水温や日長、そして熱帯に近づくにつれてこれらの要因よりもモンスーンによる一次生産量の変動が大きくなってくるのかもしれません。

 ルリスズメダイを用いて光が生殖腺の発達にどの様に関わっているのかについて調べています。非産卵期のルリスズメダイに産卵盛期の環境を先ず与えてみました。与えた条件は長日(14時間明期:10時間暗期;14 L10D)や短日(10時間明期:14時間暗期:10L14D)で水温20℃、25℃、31℃です。これらの条件のうち、生殖腺の発達を誘導できたのは、長日で25℃の条件でした。長日の高水温(31℃)では卵黄形成は誘導できましたが、卵母細胞は退行していきました。また、25℃の短日では生殖腺は発達しませんでした。これらのことからルリスズメダイの生殖腺の発達には長日条件が関わっていると考えられました。産卵期においても類似した実験を行った結果、活発な産卵を維持するためにはやはり適正水温での長日条件が必要であることが分かりました。

 次に、ルリスズメダイを様々な光の波長の長日条件で飼育してみました。その結果、生殖腺が発達するのは赤色>緑色>青色の順でした。この結果から、ルリスズメダイは特定の波長を生殖腺の発達に利用していることが明らかとなり、長波長帯の光受容体が何らかの役割を担っていると考えられます。眼球を摘除した魚を長日条件で飼育した結果、卵黄形成を誘導できたことから、網膜以外に存在する光受容体が関与する可能性があります。この点に関して、脳内から長波長帯の光受容体をクローニングすることに成功し、この光受容体が光受容と生殖腺内分泌軸との繋がりに関係しているのかもしれません。長波長帯の光は水の中で即座に吸収され深いところまでは届きません。ルリスズメダイはなぜ長波長帯の光を感受するのでしょうか。ルリスズメダイは浅海サンゴ礁に優先しており、長波長帯の光がふんだんにある世界に適応しています。もしかすると、このことが長波長帯の光を使うように進化してきたのかもしれません。この結果は、ルリスズメダイの生殖適正深度を浅海域に限定する要因であることを示唆しています。

  1. Bapary, M.A.J., Imamura, S. and Takemura, A. (2012). Long-afterglow-phosphorescent pigment is a potent tool for manipulation of reproductive performance in fish. Fisheries Science, 78: 337-342. [abstract]
  2. Bapary, M.A.J., Amin, M.N. and Takemura, A. (2012) Food availability as a possible determinant for initiation and termination of reproductive activity in the tropical damselfish Chrysiptera cyanea. Marine Biology Research, 8: 154-162. [abstract]
  3. Takeuchi, Y., Bapary, M.A.J., Igarashi, S., Imamura, S., Yuji Sawada, Y., Matsumoto, M., Hur, S.P., and Takemura, A. (2011). Molecular cloning and expression of long wavelength sensitive cone opsin in the brain of a tropical damselfish. Comparative Biochemistry and Physiology, 160A: 486-492.[abstract]
  4. Bapary, M.A.J., Amin, M.N. and Takemura, A. (2011) The stimulatory effects of long wavelengths of light on the ovarian development in the tropical damselfish, Chrysiptera cyanea. Aquaculture, 314: 188-192.[abstract]
  5. Bapary, M.A.J. and Takemura, A. (2010). Effect of temperature and photoperiod on the reproductive condition and performance of a tropical damselfish Chrysiptera cyanea during different phases of reproductive season. Fisheries Science, 76: 769-776.[abstract]
  6. Sri Susilo, E., Harnadi, L. and Takemura, A. (2009). Tropical monsoon environments and the reproductive cycle of the orange-spotted spinefoot Siganus guttatus. Marine Biology Research, 5: 179-185. [abstract]
  7. Park, Y.J., Takemura, A. and Lee, Y.D. (2006). Annual and lunar-synchronized reproductive activity in two rabbitfish species in the Chuuk Lagoon, Micronesia. Fisheries Science, 72: 166-172. [abstract]
  8. Park, Y.J., Takemura, A. and Lee, Y.D. (2006). Histological evidence of lunar-synchronized reproductive activity in the pencil-streaked rabbitfish, Siganus doliatus, the Chuuk Lagoon, Micronesia. Ichthyological Research, 53: 179-181. [abstract]

 

その他の関連論文

  1. Takemura, A., Rahman, M.S. and Park, Y.J. (2010). External and internal controls of lunar-related reproductive rhythms in fish. Journal of Fish BIology, 76: 7-26. [abstract]
  2. 竹村明洋(2008).サンゴ礁に潜む月世界,リズム生態学,体内時計の多様性とその生態機能.清水勇・大石正(編),東海大学出版会,東京.pp. 1-24.
  3. 竹村明洋(2008).概月周リズム.時間生物学辞典.石田直理雄・本間研一(編),朝倉書店,東京.pp. 30-31.
  4. Ayson, F.G. and Takemura, A. (2007). mRNA expression patterns for GH, PRL, SL, IGF-I and IGF-II during altered nutritional status in rabbitfish, Siganus guttatus. General and Comparative Endocrinology, 150: 196-204. [abstract]
  5. 竹村明洋・池田 譲(2006).時間とともに活動するサンゴ礁生物,美ら島の自然史・琉球列島の生物多様性.琉球大学21世紀COEプログラム編集委員会(編),東海大学出版会,東京.pp. 61-70.
  6. 竹村明洋(2006).月と暮らす魚たち,美ら島の自然史・琉球列島の生物多様性.琉球大学21世紀COEプログラム編集委員会(編),東海大学出版会,東京.pp. 225-235.
  7. Ayson, F.G. and Takemura, A. (2006). Daily expression patterns for mRNAs of GH, PRL, SL, IGF-I and IGF-II in juvenile rabbitfish, Siganus guttatus, during 24-hour light and dark cycles. General and Comparative Endocrinology, 149: 261-268. [abstract]
  8. 竹村明洋(2005).魚類における月齢同調産卵と月を利用した時刻あわせ.時間生物学,11: 17-22.
  9. Takemura, A., Rahman, M.S., Nakamura, S., Park, Y.J. and Takano, K. (2004). Lunar cycles and reproductive activity in reef fishes with particular attention to rabbitfishes. Fish and Fisheries, 5: 317-328. [abstract]

魚類における卵黄形成機構

初代培養肝細胞の時間変化
哺乳動物は自分の子供を母乳で育てるため、卵中には子供の栄養となる物質はほとんど入っていません。これに対して卵生動物の卵には、子供の初期成長に必要な栄養物質(卵黄タンパク質)が大量に蓄えられています。では,卵黄タンパク質はどのようにして作られるのでしょうか。魚類の場合、雌の体内で卵が成長していく時には様々なホルモンが関与しています。例えば水温などの外部環境条件が整うと、先ず視床下部から生殖腺刺激ホルモン放出ホルモンが、そしてその刺激によって脳下垂体から生殖腺刺激ホルモンが分泌されます。生殖腺刺激ホルモンは血液によって運ばれ、卵を取り囲んでいる濾胞細胞に作用し、女性ホルモン(主にエストラジオール17β)の合成を促します。女性ホルモンは血液によって肝臓に運ばれ、そこで雌だけが持つタンパク質(ビテロジェニン)の合成を誘導するのです。

 ビテロジェニンを誘導するためには女性ホルモンが最も重要なホルモンであることは疑う余地は無いのですが、最近いろいろなホルモンが間接的に肝臓におけるビテロジェニン合成に関与していることがいくつかの魚類で明らかにされてきています。私たちはテラピアとアイゴを使ってビテロジェニン合成に関わる内分泌学的機構の全体像を明らかにすることを目指し研究を進めています。

関連論文

  1. Kim, B.H., Takemura, A., Kim, S.J. and Lee, Y.D. (2003). Vitellogenin induction via androgens in primary cultures of tilapia hepatocytes. General and Comparative Endocrinology, 132: 248-255. [abstract]
  2. Kim, B.H. and Takemura, A. (2003). Culture conditions affect induction of vitellogenin synthesis by estradiol-17b in primary cultures of tilapia hepatocytes. Comparative Biochemistry and Biochemistry, 135B: 231-239. [abstract]
  3. Kim, B.H. and Takemura, A. (2002). In vitro vitellogenin synthesis in primary cultures of tilapia hepatocytes. Fisheries Science, 68: 123-131. [abstract]
  4. Kim, B.H., Takemura, A. and Nakamura, M. (2002). Comparison of in vitro vitellogenin synthesis among different nonylphenol products using primary cultures of tilapia hepatocytes. Fisheries Science, 68: 838-842. [abstract]
  5. Takemura, A. and Kim, B.H. (2001). Effects of estradiol-17b on in vitro and in vivo synthesis of two distinct vitellogenins in tilapia. Comparative Biochemistry and Physiology, 129A: 641-651. [abstract]
  6. Vijayan, M.M., Takemura, A. and Mommsen, T.P. (2001). Estradiol impairs hypo-osmoregulatory capacity in the euryhaline tilapia, Oreochromis mossambicus. American Journal of Physiology, 281: R1161-R1168. [abstract]
  7. 小笠原敬・竹村明洋・高野和則(2000).沖縄島河川に生息するテラピアの雄血中からの雌特異タンパク質(ビテロジェニン)検出.沖縄生物学会誌,11: 1-10.
  8. Rahman, M.S., Takemura, A. and Takano, K. (2000). Annual changes in ovarian histology, plasma steroid hormones and vitellogenin in the female golden rabbitfish, Siganus guttatus. Bulletin of Marine Science, in press.
  9. Rahman, M.S., Takemura, A. and Takano, K. (2000). Correlation between plasma steroid hormones and vitellogenin profiles and lunar periodicity in the female golden rabbitfish, Siganus guttatus (Bloch). Comparative Biochemistry and Physiology, 127B: 113-122. [abstract]
  10. Takemura, A., Takeuchi, H., Teruya, T., Oka, M. and Kanematsu, M. (1999). Immunochemical estimation of reproductive activity in hatchery-reared female greater amberjack, Seriola dumerili, using skin mucus. Fisheries Science, 65: 792-793.
  11. Takemura, A. and Sin, D.H. (1999). Detection of vitellogenin in the sera of male tilapia inhabiting the Okukubi river, using an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Biological Magazine, Okinawa, 37: 1-7.
  12. Takemura, A. and Oka, M. (1998). Immunochemical sexing of living yellowfin tuna, Thunnas albacares (Bonnaterre), using a vitellogenin-like protein. Aquaculture Research, 29: 245-250.
  13. Fujita, T., Takemura, A. and Takano, K. (1998). Immunochemical detection of precursor proteins of yolk and vitelline envelope, and their annual changes in the blood of Diodon holocanthus. Journal of Fish Biology, 52; 1229-1240. [abstract]
  14. Takemura, A. and Teruya, T. (1997). Purification and partial characterization of the vitellogenin of coral trout, Plectropomus leopardas. Bulletin of Marine Science, 61(3): 791-800.
  15. 竹村明洋・兼松正衛・岡 雅一(1996).体表粘液を利用したカンパチの早期雌雄判別の可能性.日本水産学会誌,62(1): 62-67.
  16. Choi, C.Y., Chang, Y.J., Takemura, A. and Takano, K. (1996). Immunochemical properties of vitellogenin and egg yolk proteins in female fusilier, Caesio diagramma. Journal of Aquaculture, 9(1): 83-92.
  17. Choi, C.Y., Takemura, A. and Takano, K. (1996). Ovarian development and changes in serum vitellogenin during the annual reproductive cycle of the female fusilier, Caesio diagramma. Galaxea, 13: 35-45.
  18. Takemura, A., Takano, K. and Takahashi, H. (1995). The uptake of macromolecular materials in the hindgut of viviparous rockfish embryos. Journal of Fish Biology, 46: 485-493. [abstract]
  19. Choi, C.Y., Chang, Y.J. and Takemura, A. (1995). Purification of vitellogenin and egg yolk protein, and changes of vitellogenin concentration during the ovulation period in elkhorn sculpin, Alcichthys alcicornis. Journal of the Korean Fisheries Society, 28(6): 753-760.
  20. Takemura, A. (1994). Vitellogenin-like substance in the skin mucus of Oreochromis mossambicus. Fisheries Science, 60(6): 789-790.
  21. Takemura, A., Nunomura, W., Takano, K. and Hirai, H. (1993). Novel female protein with biological activities of C-reactive protein and lectin in a viviparous rockfish, Sebastes taczanowskii. The Journal of Experimental Zoology, 266: 188-194.
  22. Takemura, A., Hara, A. and Takano, K. (1991). Immunochemical identification and partial characterization of female-specific serum proteins in white-edged rockfish, Sebastes taczanowskii. Environmental Biology of Fishes, 30: 49-56.
  23. 竹村明洋・高野和則(1990).グッピーの卵黄タンパク前駆物質の免疫学的検出法.ー生殖の仕組みを理解するための教材として−.生物教育,30(2): 100-106.
  24. Quinitio, G.F., Takemura, A. and Goto, A. (1989). Ovarian development and changes in the serum vitellogenin levels in the river sculpin, Cottus hangiongensis, during an annual reproductive cycle. Bulletin of the Faculty of Fisheries, Hokkaido University, 40(4): 246-253.
  25. 原 彰彦・竹村明洋・松原孝博・高野和則(1986).エゾメバル雌特異血清蛋白の免疫学的検索.北海道大学水産学部研究彙報,37(2): 101-110.